循环抗体对抵抗仔猪流行性腹泻病毒有用吗?
点击: 网友评论: 时间:2017-10-20 来源:规模e猪 作者:匡宝晓 译
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(来源:规模e猪  作者:匡宝晓 译)最近出现的冠状病毒包括在20022003年引起人类呼吸道疾病爆发的严重急性呼吸综合征(SARS)病毒和2012年鉴定的中东呼吸综合征(MERS)病毒。当代的研究表明,蝙蝠和鸟类是冠状病毒的天然储存库。

在猪身上鉴别出五种冠状病毒:三种α冠状病毒(传染性胃肠炎病毒(TGEV)、猪呼吸道冠状病毒(PRCV)和猪流行性腹泻病毒(PEDV)),一种β冠状病毒(猪血凝性脑脊髓炎病毒(PHEV),另外一种是猪δ冠状病毒(PDCoV))。

PEDVTGEVPDCoV主要引起猪的肠道感染。PRCVTGEV的刺突基因的缺失和突变的结果。这种病毒具有感染呼吸道的倾向,但也具有引起肠道疾病的能力。相比之下,PHEV感染(“呕吐和消耗性疾病”)引起脑脊髓炎,而不是肠炎,因此在区分肠道感染时通常不被考虑。

在猪冠状病毒中,PEDV已经受到相当大的关注,因为最近出现的高致病力毒株在新生猪中引起显着的发病率和死亡率。韩国(1997年)、中国(2005年)和泰国(2007年)报告了PEDV的灾难性爆发。20134月在美国发现PEDV以来,估计导致了800万头仔猪死亡,2014年经济损失达481万美元至9.29亿美元。

PEDV复制的主要位点是整个小肠绒毛上皮细胞的细胞浆。感染引起上皮细胞变性和绒毛萎缩,并导致腹泻、脱水和粪便中长期长期排放PEDV。也报道了在幼猪感染的急性阶段存在PEDV的病毒血症。PEDV感染的最常见的临床表现是腹泻,即水样和絮状粪便,通常伴有呕吐。发病率和死亡率是高度年龄依赖性的,新生仔猪受到的影响最严重。因此,在毫无免疫力的猪群中爆发可能导致2周龄以下仔猪的90%死亡率和24周龄仔猪的不超过40%的死亡率。这种年龄依赖性的死亡率差异可能是新生仔猪绒毛上皮细胞再生较慢和免疫系统发育不完善的结果。实验感染的3周龄仔猪在接种后的第一周显示出平均日增重的显着降低,并且在随后的4周内没有代偿性增重。在临床上,Olanratmanee等人(2010)报道, 妊娠的后备母猪和经产母猪感染PEDV后也可以发生繁殖性能的降低,包括分娩率降低12.6%、返情率提高5.7%、流产率提高1.3%,而每窝的木乃伊胎数量增加2.0%。

通常认为母乳免疫,即乳汁中的抗PEDV分泌型IgA是限制PEDV在肠道中复制和保护仔猪免受临床疾病的关键。

这个概念主要的依据是,研究表明在母乳中具有更高抗TGEV 分泌型IgA水平的母猪能够更好地保护牠们的后代抵抗临床TGE。这些研究是TGEV有效预防和控制策略的基础,这一基础已经建立50多年了。然而,对PEDV的免疫力与对TGEV的免疫力之间的差异尚未仔细研究,而且值得进行研究。在这个项目中解决的问题是初乳(被动)抗体对保护新生仔猪抵抗PEDV感染的作用。具体来说,本实验的目的是利用被动转移模型来量化PEDV循环抗体对新生仔猪PEDV复制和临床疾病过程的影响。

摘要

利用被动抗体转移模型评估循环抗体对保护无免疫力仔猪对猪流行性腹泻病毒(PEDV)的作用。利用随机区组设计将来自6头母猪的仔猪(n=62)随机分配到6个不同的处理中,保证每个处理中都有不同母猪的仔猪。设计每个处理组的仔猪通过腹腔内注射浓缩血清抗体来实现不同水平的PEDV循环抗体。24小时后,仔猪口服接种PEDVUSA/IN/2013/19338E,每头仔猪1×103TCID50),而后监测14天。整个实验过程中仔猪与其母亲在一起。每天收集母乳样品、仔猪粪便样品和有关仔猪临床体征、体重和体温的数据。通过PEDV实时反转录PCR检测粪便样品。血清、初乳和常乳样品则检测PEDVIgGIgA和病毒中和抗体。评价全身性PEDV抗体水平对生长、体温、粪便排毒、存活和抗体应答影响的数据。分析表明,循环抗体部分改善PEDV感染的效果。具体来说,抗体阳性组更快地恢复到正常体温,并且表现出比没有PEDV抗体的仔猪更高的存活率。当结合以前关于PEDV的文献,可以得出结论,母乳中的循环抗体和母乳分泌型IgA有助于保护新生儿猪抵抗PEDV感染。总之,本实验结果表明,被动注射的循环抗体有助于保护新生仔猪抵抗PEDV感染。

引言

冠状病毒科是一种大且复杂的、有包膜、单链、正义RNA病毒家族,引起人和动物的肠道和呼吸道疾病。近些年出现的冠状病毒包括严重的急性呼吸综合征(SARS)病毒,该病毒在20022003年引起人类急性呼吸道疾病和2012年中东呼吸综合征(MERS)的爆发。当代的研究表明,蝙蝠和鸟类是冠状病毒的天然储存库。

在猪,已经鉴别出五种冠状病毒:其中有三种α冠状病毒(传染性胃肠炎病毒(TGEV)、猪呼吸道冠状病毒(PRCV)和猪流行性腹泻病毒(PEDV)),一种β冠状病毒(猪血凝性脑心肌炎病毒(PHEV))和一种猪δ冠状病毒(PHEV)。PEDVTGEVPDCoV主要引起猪的肠道感染。PRCVTGEV的刺突基因的缺失和突变的结果。这种病毒具有呼吸道的嗜性,但也具有产生肠道疾病的能力。相反,PHEV感染(“呕吐和消耗性疾病”)引起脑心肌炎而不是肠道疾病,因此肠道疾病的鉴别诊断时通常不考虑该病毒。

在这些猪冠状病毒中,PEDV引起了广泛的关注,因为最近出现的高致病性毒株已经造成了新生仔猪相当高的发病率和死亡率。PEDV的灾难性爆发报道于韩国(1997)、中国(2005)和泰国(2007)。20134月在美国发现后,PEDV估计导致了800万头仔猪死亡,2014年经济损失为481万美元~9.29亿美元。

PEDV复制的主要位点是贯穿于小肠的绒毛上皮细胞的细胞质。感染引起上皮细胞变性和绒毛萎缩,导致腹泻、脱水和粪便中PEDV的长期排毒。在幼龄仔猪感染的急性阶段也发现了PEDV的病毒血症。PEDV感染的最常见的临床症状是腹泻,呈水样和絮状粪便,通常伴有呕吐。发病率和死亡率呈高度年龄相关性,新生仔猪影响最为严重。因此,在没有免疫力的猪群中,PED的爆发可造成2周龄及以下仔猪90%的死亡率,24周龄的死亡率同行不超过40%。这种年龄依赖性的死亡率差异可能与新生仔猪绒毛上皮细胞再生较慢和免疫系统发育较不完善有关。3周龄仔猪实验性感染,感染后的第一周表现平均日增重的显著降低,而且在随后的4周内没有补偿性增重。在临床上,Olanratmanee等(2010)报道,人参的额后备母猪和经产母猪感染PEDV后也可造成繁殖性能的降低,表现在分娩率降低12.6%、返情率增加5.7%,流产率增加1.3%,每胎的木乃伊胎增加2.0%

通常认为乳汁免疫,即母乳中的抗PEDV分泌型IgA,是限制PEDV在肠道中复制和保护仔猪免受临床影响的关键。这个结论主要来源于研究显示在母乳中具有较高抗TGEVSIgA水平的母猪能够更好地保护其仔猪抵抗临床TGE。这些结论是已经建立了50多年的成功的TGEV预防和控制策略的基础。然而,对PEDV的免疫力与对TGEV的免疫力之间的差异尚未得到仔细研究,因此值得探讨。本研究中要解决的问题是初乳(被动)抗体对保护新生儿对抗PEDV的影响。具体来说,本实验的目的是使用被动传递模型定量PEDV循环抗体对新生仔猪PEDV复制和临床疾病过程的影响。

材料和方法

实验设计

该研究在爱荷华州立大学负责研究办公室(ISU2-14-7736-S)的批准下进行。来自6PEDV间接荧光抗体(IFA)阴性的母猪的仔猪(n=62)腹腔内(IP)注射浓缩的血清抗体,这些血清足以达到6种靶向水平的PEDV循环抗体之一。24小时后所有仔猪均接种PEDV,随后每天观察,直到接种后(DPI14天或直到有必要人性化扑杀。每天采集母乳和仔猪粪便样本,并记录仔猪临床表现如体重、体温等的数据。母猪的血清样品在DPI714天采集,而仔猪的血清在DPI0114天或人性化扑杀时采集。粪便样品采用PEDV实时逆转录PCRrRT-PCR)检测。血清、初乳和常乳用于检测PEDVIgGIgA和病毒中和抗体。对数据进行分析以评价PEDV循环抗体水平对结果的影响。

猪流行性腹泻病毒(PEDV)接种物

用于本研究的PEDV毒株(USA/IN/2013/19338E)是2013年在衣阿华大学诊断实验室从印第安纳猪场送检的仔猪小肠分离到的。该毒株是高致病力毒株,与中国20112013年报道的中国毒株基因同源性>99%。据报道,在5日龄仔猪的病毒感染剂量报道为0.056TCID50。在实验条件下,接种5日龄仔猪在DPI第一天引起水性腹泻,在DPI第四天在粪便中排毒和在DPI第四天内的肠绒毛萎缩。本研究中使用的接种物是病毒在第七代细胞培养物。

基于滴定结果,使用Reed-Muench方法计算50%终点为1×105 TCID50/ml

动物和动物护理

该实验在爱荷华州立大学家畜传染病隔离设施(LIDIF)进行,该设施是由实验动物护理评估和认证协会(AAALAC)认可的生物安全2级研究设施。该设施配备了单程非循环通风系统,该系统提供从低污染区域到高污染区域和负压区域的定向流,以防止区域到区域或房间到房间的空气污染。每个房间单独通风,严格控制湿度和温度。

从一个商品母猪场获得七个临床健康的第二胎怀孕110天的母猪。为了验证其阴性状态,使用试剂特异性的rRT-PCR检测了母猪粪便拭子的PEDVTGEVPDCoV,并且使用IFA检测血清样品的PEDV抗体。

实验的实施

浓缩PEDV抗体

用于沉淀猪血清蛋白和抗体的程序是按以前出版物修正的方法进行的。

处理

将浓缩的PEDV抗体溶液在22℃解冻2小时,然后用PBS1X pH 7.4)稀释2倍以产生6种处理,即5种稀释(1:801:1601:3201:6401:1280)加抗体阴性对照(PBS 1XpH 7.4)。为了分配处理(表1),通过母猪阻断仔猪,并使用统计软件RR 3.2.0R foundation)的随机区组设计中随机处理。值得注意的是,所有的仔猪都与他们的母亲保持一致,但所有的处理都在每个窝里。按1.35ml/kg体重腹腔接种溶液。

 

PEDV接种

本研究攻毒使用的美国PEDV强毒猪(USA/IN19338/2013)。先前描述了该分离株的分离、增殖和鉴定。在DPI 0天,将PEDV储备液(细胞培养物中的第7代,1×105TCID50/ml)稀释至估计浓度为1×103TCID50/ml,以1:4与牛奶代用品(PetAg Inc.HampshireIL)混合,每头仔猪口服(5ml)。此后,每天监测母猪的腹泻、泌乳能力、食欲和警觉性。每天监测仔猪腹泻、直肠温度、脱水以及站立、走动和哺乳的能力。将不能进行哺乳、不愿意站立或基于皮肤展开显示≥10%脱水的仔猪用100mg/kg体重的剂量静脉注射戊巴比妥钠(Fatal-Plus®Vortech PharmaceuticalsMI)实行安乐死。

生物样品的采集

血清

从母猪(DPI714天)和仔猪(DPI0,414天)收集用于抗体测试的血清样品。使用一次性血液收集系统(Becton DicksonFranklin LakesNJ)和血清分离管(KendallMansfieldMA)从颈静脉或颅腔静脉采集血液样品。通过在1,500×g离心15分钟处理血液样品,等分到2ml低温管(BD Falcon TMFranklin LakesNJ)中,并储存在-20℃直到测试。

乳腺分泌物

DPI314天每天从母猪收集用于抗体测试的初乳和常乳样品。母猪施用20USP单位的催产素(VetOne®)以促进乳腺分泌物的收集。在4℃下以13,000×g离心15分钟处理样品以除去脂肪和碎片。然后将脱脂的样品等分到2ml低温管(BDFalcon TM)中,并在-20℃下储存,直到测试。

粪便样品

用于猪冠状病毒R T - P C R 测试的粪便样品包括在进入实验室之前从个体母猪收集的粪便拭子( B DBBLTMCultureSwabTMCollection/Transport系统,Thermo-Fisher Scientific)样品,以及在DPI 014天之间收集的个体仔猪粪便样品。使用一次性粪便回路(VetOne®)从每头仔猪收集约1克粪便,在收集后立即与1ml PBS1X pH 7.4Sigma-Aldrich)混合,置于2ml低温管(BD FalconTM),并保存在-80℃。

冠状病毒逆转录酶聚合酶链式反应(rRT-PCRRNA提取

简言之,从100μl粪便拭子样品中提取病毒RNA,按照制造商提供的程序,使用MagMAXTM病毒RNA分离试剂盒(Life Technologies)和96磁性颗粒处理器(Thermo-FisherScientific)将其洗脱到90μl洗脱缓冲液中。

冠状病毒引物和探针

使用Madson等人(2014)描述的基于PEDV核衣壳(N)基因的rRT-PCR在爱荷华州立大学兽医诊断实验室(ISU-VDL SOP9.5263)进行常规检测母猪粪样品和仔猪粪便样品的PEDV。设计靶向PEDV N基因保守区的引物和探针以匹配在GenBank(登录号KF272920)中公开的美国PEDV核苷酸序列。

实时RT-PCR

将洗脱的RNA、引物和探针与商品试剂(多重一步RT-PCR试剂盒,Life Technologies)混合,并且RT-PCR反应在ABI7500 Fast仪器(Life Technologies)上进行。

冠状病毒抗体试验

PEDV荧光聚焦中和(FFN)试验

测试初乳、常乳和血清样品的中和抗体。在FFN试验前,用RennetRennetMucor mieheiSigma-Aldrich)处理脱脂常乳和初乳样品。简言之,将5μl Rennet加到1ml脱脂常乳或初乳中并短暂涡旋。将混合物在37℃下温育30分钟,涡旋,然后以2,000×g离心15分钟。最后收获上清液并检测中和抗体。

结果

 

母猪

接种前收集的粪便样品为PEDVTGEVPDCoVrRT-PCR阴性。同样,通过IFA<1:8)和PEDV WV ELISAS/P<0.80)分析DPI第七天收集的来自母猪的血清样品也是抗体阴性的。在此基础上,实验开始时所有母猪被认为是对PEDV没有抵抗力的。

7头母猪共分娩74头活仔、3个死胎和4个木乃伊胎(表1)。在整个实验期内每窝仔猪都整窝与其母亲保持在一起。一头母猪及其仔猪在DPI6天被淘汰,因为这头母猪无乳。其余6头母猪在整个研究中临床上正常。在6窝仔猪中没有检测到存活仔猪数目的显着差异(Kruskal-Wallis检验)。

DPI7天采集的母猪血清具有0.20.6PEDV WVIgG ELISA S/P值。到DPI14天,S/P值范围为1.22.7。初乳中(产后48小时内)IgGIgAPEDV WV ELISA S/P值分别为0.970.16DPI5天采集的常乳具有0.00.2PEDV WV IgA ELISA S/P值。到DPI14天,常乳中的S/P值在0.42.0(图1)。血清和常乳中PEDV抗体水平升高,表明在实验过程中母猪感染了PEDV,大概是通过受PEDV污染的仔猪粪便感染的。

6窝中没有检测到存活率的显着差异(Kruskal-Wallis检验)

仔猪

接种PEDV之前,所有仔猪在临床上外观和行为上是正常的。基于在DPI 0天采集的仔猪个体粪便样品的阴性rRT-PCR结果,证实仔猪在接种之前没有PEDV感染。

所有仔猪在接种当天都具有正常的粪便,但是在DPI123天分别有29%(n=16)、69%(n=43)和89%(n=50)的仔猪具有半固体或水样的粪便。此后观察到腹泻逐渐消退。来自每个处理组≥1头猪的粪便样品在DPI1天为PEDV rRT-PCR阳性,而所有样品在DPI2天均为阳性。在DPI2到第4天观察到粪便中病毒的最高浓度(图2a)。所有抗体阴性对照组的粪便样品到DPI12天都为阳性。来自该组唯一剩余的仔猪粪便样品在DPI13和第14天为阴性。从DPI6天开始的抗体阳性组中观察到PEDV rRT-PCR阴性粪便样品,但从DPI14天从40%(n=6)的抗体阳性猪中采集到阳性粪便样品。统计分析发现对定义为6组或定义为2组(抗体阳性和抗体阴性对照)处理间排毒量没有影响。

处理1仔猪作为抗体阴性对照组;处理2~处理6的仔猪抗PEDV循环抗体水平增加。

a校正的PEDV rRT-PCR定量循环(Cq=35-样品Cq)接种PEDV时,处理间仔猪平均体重范围为1.92.3kg。存活到研究结束的仔猪体重增加了12.5150.0%。不管是定义为6组(其中5组不同抗体浓度处理组和1组抗体阴性组),还是定义为2组(抗体阳性处理组和抗体阴性对照组)都没有发现PEDV对仔猪体重的显著影响。

PEDV感染对体温随时间的定量影响显示在图2b中。定义为6个处理组之间没有显著的体温差别,但2个处理组(抗体阳性vs抗体阴性)之间在DPI45678天显示了体温的显著差异(线性混合模型,p <0.05)。

通过分析具有“正常”体温(是/否)的仔猪的比例来评价PEDV感染体温的定性效应。在DPI-4-1天测量的仔猪平均体温为39.3℃,95%的置信区间为38.6℃~40.1℃(“正常范围”)。所有仔猪在DPI0天体温正常。从DPI 112观察到体温低于正常范围下限的仔猪。DPI 1314,所有存活仔猪的体温都在正常范围内。统计分析发现,不管是定义为6个处理组或定义为2个处理组,体温数据的统计分析发现处理对正常体温的仔猪比例没有影响。

总共有71%的仔猪(n=44)在DPI 213之间死亡(图2c)。其中,22.7%(n=10)被安乐死,因为他们符合以前建立的临床标准(不能哺乳、不愿意站立或脱水≥10%)。与抗体阴性对照组相比,通过危险回归分析检测到死亡时间的显着差异(处理5p<0.05)或有差异的趋势(处理6p=0.11)。

如表2所示,在DPI 4采集的仔猪血清样品的FFN抗体效价<1:8ELISA IgA S/P值为0.50.7ELISA IgG S/P值为0.60.7IgG)。根据不同处理,在DPI 0,即处理后24小时采集的血清样品具有FFN抗体滴度范围<1:81:32,而ELISAS/P值分别为0.23.3IgA)和0.51.4IgG)。假定在研究终止时的采样点(DPI-4014)和小样本量(存活仔猪数)的数目,使用Wilcoxon rank检验来分析DPI -4014PEDV抗体应答。使用这种方法,处理组与对照组在DPI -414未检测到FFNIgAIgG血清抗体应答的显着差异,但相对于抗体阴性仔猪,大多数处理组具有更高的抗体应答(处理1)(表2)。

 

讨论

本实验的目的是通过使用“被动抗体模型”定量循环被动抗体对新生小猪的PEDV感染过程的影响来扩展我们对抗PEDV免疫的理解。生理学上,这种方法依赖于这样的事实,即注射到腹腔中的抗体被淋巴系统迅速吸收并通过腔静脉进入循环系统。理论上,腹腔内注射与静脉内注射有相同的生物利用度。因此,可能通过腹腔内注射特定浓度的浓缩PEDV抗体溶液(表2)产生不同水平的循环PEDV抗体。

被动抗体模型以前已被用于研究小鼠、大鼠和仓鼠的母源性体液免疫。在猪,这种方法以前用于研究被动抗体对轮状病毒感染和猪繁殖与呼吸综合征病毒的影响。Hodgins等人(1999)发现,被动抗体提供了针对轮状病毒临床感染的保护,但也抑制了仔猪的主动免疫应答。Nguyen等(2006)报道,被动抗体保护的新生仔猪抵抗轮状病毒感染,并确定高滴度的母源抗体抑制了效应和记忆B细胞反应。其他工作者发现腹腔注射足以达到血清中和抗体滴度≥1:16PRRSV抗体,抑制25周龄仔猪体内的PRRSV复制。

在目前的实验中,在一系列抗体处理水平上评价被动抗体对PEDV感染相关的结果(例如体重、体温、存活率和仔猪粪便中的PEDV排毒和对感染的血清学反应)的影响。实验的大小受到处理中仔猪数量以及日常观察、采用和处理的物理和后勤要求的限制。实验的限制被实验设计抵消。具体来说,随机区组设计允许将所有处理随机分配给所有窝,从而控制母猪之间的差异。

在实验条件下接种PEDV的新生仔猪,腹泻通常发生在DPI1以内,在DPI2内在粪便中检测到PEDV,在DPI3内开始死亡。在该实验的条件下观察到类似的情况。首先在DPI1观察到腹泻,所有粪便样品在DPI2均为PEDV rRT-PCR阳性,并且在DPI2开始死亡。统计分析发现,循环PEDV抗体不能保护仔猪免受PEDV对生长的负面影响,减少或消除PEDV在粪便中的排毒,或影响对PEDV感染的体液免疫应答。然而,循环抗体可部分改善PEDV感染对体温的影响和改善仔猪存活。具体来说,抗体阳性组更快地恢复到正常体温(图2b),并且表现出比PEDV抗体阴性对照仔猪更高的存活能力(图2c)。这些结果与以前的猪冠状病毒报告相符。Shibata等(2001)报道,被动PEDV特异性抗体可有效预防PEDV感染并降低2日龄仔猪的死亡率。Stepanek等(1982)发现,足够水平的TGEV特异性被动抗体推迟了4日龄仔猪由于TGEV感染引起的死亡。产生这些结果的机制尚未明确,但我们假设可能涉及以下四种机制中的一种或多种:

1. 尽管在本实验中没有确认病毒血症,但在实验条件下接种的幼龄仔猪已经报道了持续至少DPI7PEDV病毒血症。由于注射浓缩抗体的仔猪在DPI0具有高达1:32FFN抗体滴度,因此可以假设通过腹腔注射递送的循环中和抗体可能降低了PEDV病毒血症的水平和/或持续时间,并且改变了PEDV病毒血症的临床感染病程。虽然没有关于可以比较这些结果的PEDV报告,但是结果将与Lopez等(2007)先前的报告一致,这表明腹腔注射PRRSV中和抗体减少或消除仔猪(15日龄)的PRRSV病毒血症和延迟传播到混合的哨兵猪。

2. PEDV病毒血症期间,PEDV循环抗体(中和和非中和)与病毒抗原决定簇的结合可能导致中和、凝集和/或补体结合。这个过程可以通过将抗原呈递给适当的细胞(树突细胞、巨噬细胞和B细胞)来促进体液和/或细胞免疫应答。

3. 通过抗体和免疫系统的其它组分之间的相互作用实现抗体依赖性细胞介导的细胞毒性(ADCC),例如,补体、吞噬细胞和自然杀伤细胞,可以加速针对PEDV的细胞介导的免疫应答(CMI)。 ADCC通过诱导细胞死亡诱导分子的表达杀死抗体包被的感染细胞。因而推测,这种机制对任何PEDV感染的细胞都有效;不仅肠细胞。 Madson等(2015)报道,除肠细胞外,肠系膜淋巴结和脾脏中的细胞可通过免疫组织化学染色发现PEDV阳性。

4. 被动转移的循环PEDV IgG可以通过细胞旁漏和新生仔猪Fc受体直接从毛细血管进入小肠。如果是这样,转运的IgG可以在肠腔内中和PEDV/或通过促进微管细胞顶端表面上的受体摄取PEDV抗原来协助体液和细胞免疫。同样,虽然没有针对这一假设对PEDV进行研究,但已知IgG在隐窝细胞中对细小病毒感染起重要作用。针对该假设的证据是,IgA在保护感染绒毛肠细胞的肠道病毒中起主要作用,例如。TGEV和轮状病毒,PEDV主要感染绒毛肠细胞。

将该实验的结果与文献中报道的工作结合,可以得出结论,母乳中的循环抗体和母乳分泌型IgA有助于保护新生猪对抗PEDV感染。除此之外,还有一系列问题,例如,什么机制产生保护效应?哪种抗体同种型和多高浓度具有保护性?在本实验中检测的抗体水平和抗体同种型如何与通过反馈、疫苗接种或两者的组合在实际生产中实现抗体水平和抗体同种型相关。无论如何,明确的一点是,通过传递初乳中的高抗体滴度和在母乳中的高滴度的分泌型IgA的母猪将为仔猪提供对最佳保护。

摘自:规模e猪,如需转载请注明出处。 

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